Organismo chupador de sangre

Los organismos chupadores de sangre , hemato "sangre" griegos y -fagos "comen" o "sanguinívoros" son organismos que se alimentan de sangre . Suelen ser ectoparásitos (parásitos que no entran en el interior de su huésped, pero que se adhieren temporalmente a su piel).

En el ecosistema, ocupan puntos particulares en las redes tróficas (los chupadores de sangre suelen ser presas y depredadores del mismo huésped), lo que les confiere características inusuales en el sistema depredador-presa .

• Entre los mamíferos , están los murciélagos vampiros  ;
• Entre las aves, una de las especies de pinzón de Darwin en las Islas Galápagos , el Pointed Geospize , se alimenta de sangre que extrae de los piqueros  ;
• Entre los organismos acuáticos (cercanos a los peces), podemos mencionar las lampreas.
• Entre los anélidos , podemos citar ciertas especies de sanguijuelas (incluidas varias de las que se encuentran en Francia );
• Entre los artrópodos , se pueden mencionar varios insectos chupadores-mordedores, tales como:
  • los mosquitos  ;
  • las moscas negras  ;
  • la tribu Stomoxyini de los Muscinae ( mosca del ántrax , mosca del cuerno );
  • los tábanos que pican para desgarrar la carne;
  • los flebótomos  ;
  • los Ceratopogonidae  ;
  • las pulgas (Siphonaptera) y los piojos (Phthiraptera);
  • los alfileres chupadores de sangre (Triatoma y Cimicidae)

o ácaros como:

• las garrapatas  ;
• los ácaros rojos en las aves de corral  ;
• las niguas .

El entomólogo MMJ Lavoipierre distingue dos modalidades esenciales de hematofagia: la picadura o el artrópodo soleófago (del griego solen , pipa, y fageína , comer) donde el animal perfora la piel gracias a una larga probóscide, perforando y cateterizando los capilares venosos ( de ahí el término inglés "alimentación capilar"). Se trata del grupo de las chinches , los mosquitos y los piojos . Con la mordida de telmophage (del griego têlma swamp, y phagein to eat), el animal lacera la dermis para crear un microhematoma, un charco de sangre (de ahí el término inglés para "alimentación en charco") del que aspira el contenido. (ejemplo: mosquitos de la familia de los flebótomos ).

Búsqueda de host y orientación espacial

Los chupadores de sangre , a través de un sistema perceptivo especialista ( olfato , termopercepción , quimotactismo , visión nocturna ...), localizan a sus huéspedes utilizando diferentes índices como:

• radiación infrarroja (calor que emana del cuerpo de un huésped potencial), que es suficiente, por ejemplo, por sí sola, para provocar una respuesta de extensión de la trompa , pero que, no obstante, puede ser modulada por la experiencia (demostrado en Rhodnius prolixus por Lallement)
• vibraciones
• factores químicos.

La percepción de la temperatura y / o moléculas emitidas por el huésped se realiza mediante receptores sensoriales especializados:

• Percepción visual: algunos chupadores de sangre como la garrapata no la tienen. Los insectos como las chinches tienen suficiente visión para provocar respuestas optomotoras (reflejo de estabilización en respuesta a los movimientos de objetos en el entorno)
• Termopercepción: los triatominos como Triatoma infestans aprecian la temperatura de una fuente distante y su dirección;
  • Percepción de los vasos sanguíneos  : varios hematófagos detectan el vaso a través de la piel y / o cuando penetra el rostro. Las ninfas triatominas o el mosquito hembra son capaces de localizar bajo la piel un vaso sanguíneo que está a su alcance. Triatomine hace esto, gracias a los termorreceptores antenales;
• Sensibilidad “quimio-olfativa” que permite la percepción de moléculas (¿hormonas?) Y olores;
  • percepción de CO 2  : este gas es un trazador emitido por la exhalación . Algunos mosquitos y "moscas tsé-tsé" lo perciben pero tampoco se muestran atrapados por otras fuentes de CO 2 (compostaje, combustión);
  • Percepción de la transpiración (o marcas dejadas por ella): los mosquitos Aedes (por ejemplo, Aedes atropalpus ) están equipados con sensores de este tipo;
  • Percepción del vapor de agua  : asociado a la temperatura, aparentemente es el factor de atracción que se vuelve predominante cuando un chinche chupa sangre llega cerca de su anfitrión.
  • Anemopercepción: existen respuestas anemotácticas que dan como resultado la orientación del insecto hacia el origen de una corriente de aire (en ausencia de otros estímulos);
  • Percepción del ácido láctico  : este es el caso del mosquito Aedes aegypti
  • Las características de osmolaridad / salinidad y química confirman al insecto que está a punto de extraer sangre y luego comenzar su comida;
  • Percepción auditiva. Este caso parece más raro, pero un estudio ha demostrado que una mosca chupa sangre se guía hacia las ranas a través del canto de los machos.

Orientación en el espacio después de la comida.

Una vez ingerida la comida, las ninfas de ciertos insectos nocturnos y no voladores (triatominos por ejemplo) deben encontrar su refugio diurno:

• Percepción de feromonas de “agregación” y “parada”: estas feromonas de agregación son emitidas en particular por sus excrementos. Luego es controlado por su ciclo diurno.

• Regulación de la modulación del comportamiento hematófago: los comportamientos de "búsqueda" (búsqueda activa y / o espera en busca del huésped) pueden ser modulados por el estado fisiológico de los individuos:
  • Un individuo hambriento puede buscar un anfitrión más activamente;
  • Un individuo recién alimentado ha inhibido las reacciones de búsqueda;
  • Un individuo vulnerable debido a que acaba de someterse a una muda también ve inhibida su conducta de búsqueda, y luego la reanuda gradualmente;
  • Una comida completa puede incluso inducir la repulsión de los insectos a estímulos químicos o térmicos que de otro modo serían atractivos.

Otros receptores: las garrapatas no tienen receptores antenales, sino otro tipo de órganos, en particular los ubicados en las patas. No tienen visión pero se orientan precisamente hacia sus anfitriones, quizás atraídos por su olor, más que por su temperatura porque pueden parasitar serpientes, lagartijas o animales de sangre fría .

Nota: la sensibilidad olfativa del chinche hematófago Rhodnius prolixus varía según la hora del día (inhibida durante el día, activada por la noche). Este error también responde de manera diferente a diferentes estímulos químicos .

Eficiencia relativa de los receptores sensoriales

Se cree que la precisión de la percepción sensorial se refleja en gran medida en el número de quimiorreceptores. Y parece variar según el estilo de vida del hematófago, y más precisamente según si el hematófago vive en asociación permanente o no con su huésped.

Podemos distinguir

• Especies generalmente cercanas a su hospedador: son, por ejemplo, los piojos y ciertas pulgas ( pulgas “domésticas” para los humanos). Estos organismos tienen solo de 10 a 50 receptores de antena, respectivamente. La chinche Cimex lectularius tiene 56, un poco más que la pulga;
• Especies que viven más o menos lejos de su anfitrión: son, por ejemplo, los mosquitos Culex o la “mosca del establo”, Stomoxys calcitrans (alrededor de 5.000 receptores de antena). El Triatoma infestans, que pasa parte de su vida lejos de su anfitrión, tiene 2.900.

Estos quimiorreceptores no solo se utilizan para localizar al huésped más cercano, sino también dentro de la especie para la comunicación hormonal, incluso para las necesidades de la sexualidad. En una especie cuyos machos y hembras suelen estar muy separados, se necesita un mayor número de receptores. Los ritmos circadianos regulan sus funciones.

Ejemplos:

• Malaria (= Malaria), causada por un protozoo (Plasmodium falciparum) inyectado durante la picadura de mosquitos hembra del género Anopheles
• Filariasis linfática (= elefantiasis), debida a gusanos parásitos filiformes ( filarias ) Wuchereria bancrofti y Brugia malayi transmitidos por varios géneros de mosquitos ( Anopheles , Culex , Aedes , ...);
• Dengue , virus transmitido por mosquitos hembra del género Aedes  ;
• Oncocercosis (= “ceguera de los ríos”), gusanos filiformes de la especie Onchocerca volvulus , transmitidos por moscas negras de la familia Simuliidae;
• Leishmaniasis cutánea; debido a protozoos flagelados (del género Leishmania , familia de Trypanosomidae ), transmitidos por dípteros del género Phlebotomus y del género Lutzomyia  ;
• Tripanosomiasis americana (= "enfermedad de Chagas"), causada por un protozoo ( tripanosoma ); Trypanosoma cruzi se transmite a través de los excrementos de los chinches chupadores de sangre de la subfamilia de los triatominos;
• Tripanosomiasis (= "enfermedad del sueño") causada por un parásito tripanosoma, Trypanosoma brucei , transmitido por la picadura de varias moscas del género Glossina (llamadas "moscas tsetsé" o "mutmout" en África);
• rabia y algunas otras enfermedades (a veces por mordeduras accidentales de murciélagos );
• Infección por el virus del Zika

Ecoepidemiología

Muchos insectos chupadores de sangre son vectores de enfermedades. En estos insectos, a menudo solo la hembra es hematófaga, en preparación para la formación de huevos , para lo cual necesita una gran cantidad de proteínas .

Recientemente se ha demostrado que hay muchos factores endógenos que explican el atractivo de un individuo para un hematófago.

Algunos parásitos son literalmente capaces de manipular a su huésped para hacerlo más "atractivo" para los hematófagos, lo que les permite difundir sus genes y su progenie.

Ver también

Artículos relacionados

• Sangre
• Dieta
• La alimentación animal
• Parasitismo , parasitosis
• Epidemiología , ecoepidemiología
• Mosquitos , pulgas , piojos , garrapatas
• malaria
• enfermedad de Lyme
• Zoonosis
• Feromonas de agregación

Bibliografía

• (fr) Aurélie Bodin, Modulación del comportamiento de búsqueda de hospedadores en insectos chupadores de sangre: importancia de los factores endógenos  ; Tesis doctoral en Ciencias de la Vida (Universidad François Rabelais), 2008-10-31, PDF, 145 páginas

Referencias

1. Aurélie Bodin, modulación del comportamiento de búsqueda de acogida en los insectos chupadores de sangre: Importancia de los factores endógenos  ; Tesis doctoral en Ciencias de la Vida (Universidad François Rabelais), 2008-10-31, PDF, 145 páginas
2. (in) MMJ LAVOIPIERRE, "  Mecanismo de alimentación de artrópodos chupadores de sangre  " , Nature , vol.  208, n o  50071965, p.  302-303.
3. Marcel Leclercq, Moscas, nocivas para los animales domésticos , Vander,1971, p.  25.
4. Nicolas Valeix, Parasitología. Micología , De Boeck Superieur,2016, p.  5.
5. Lallement, H. (2007). Habituación y condicionamiento aversivo clásico de la respuesta de extensión de la probóscide en un insecto hematófago, Rhodnius prolixus . Informe de pasantía M2, Universidad de Tours, 66 págs.
6. tesis de Aurélie Bodin , ya citado (véase la página 30/145)
7. Lazzari, CR y Núnez, J. (1989). La respuesta al calor radiante y la estimación de la temperatura de fuentes remotas en Triatoma infestans . Revista de fisiología de insectos, 35: 525-529.
8. Ferreira, RA, Lazzari, CR, Lorenzo, MG y Pereira, MH (2007). ¿Los insectos hematófagos evalúan la temperatura de la superficie de la piel para detectar vasos sanguíneos? PLoS One 2, e932. doi: 10.1371 / journal.pone.0000932.
9. Bogner, F. (1992). Propiedades de respuesta de los receptores sensibles al CO2 en moscas tse-tse (Diptera: Glossina palpalis) . Entomología fisiológica, 17: 19-24.
10. Bowen, MF, Davis, EE, Haggart, D. y Romo, J. (1994). Comportamiento de búsqueda de hospedadores en el mosquito autógeno Aedes atropalpus. Revista de fisiología de insectos , 40: 511-517
11. Bowen, MF y Davis, EE (1989). Los efectos de allatectomy y el reemplazo de la hormona juvenil sobre el desarrollo de host-comportamiento de búsqueda y la sensibilidad del receptor de ácido láctico en el mosquito, Aedes aegypti . Entomología médica y veterinaria, 3: 53-60.
12. Guerenstein, PG y Núñez, JA (1994). Respuesta alimentaria de las chinches hematófagas Rhodnius prolixus y Triatoma infestans a las soluciones salinas: un estudio comparativo . Revista de fisiología de insectos, 40: 747-752.
13. Friend, WG y Smith, JJB (1977). Factores que afectan la alimentación por insectos chupadores de sangre . Revisión anual de entomología, 22: 309-331.
14. Science magazine news (2017) Observa cómo las moscas chupan la sangre de esta rana escuchando sus llamadas de apareamiento , publicado el 29 de noviembre de 2017
15. Lorenzo, MG y Lazzari, CR (1998). Patrón de actividad en relación a la explotación y alimentación del refugio en Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae). Acta Tropica, 70: 163-170.
16. Lorenzo Figueiras, AN, Kenigsten, A. y Lazzari, CR (1994). Agregación en el insecto hematófago Triatoma infestans: señales químicas y patrón temporal . Revista de fisiología de insectos, 40: 311-316.
17. Lorenzo Figueiras, AN y Lazzari, CR (1998). Agregación en el insecto hematófago Triatoma infestans: un factor de ensamblaje novedoso . Entomología fisiológica, 23: 33-37.
18. Lorenzo, MG y Lazzari, CR (1996). El patrón espacial de defecación en Triatoma infestans y el papel de las heces como marca química del refugio . Revista de fisiología de insectos, 42: 903-907.
19. Lorenzo, MG y Lazzari, CR (1998). Patrón de actividad en relación a la explotación y alimentación del refugio en Triatoma infestans (Hemiptera: Reduviidae) . Acta Tropica, 70: 163-170.
20. Bodin, A., Barrozo, RB, Couton, L. y Lazzari, CR (2008). Modulación temporal y control adaptativo de la respuesta conductual a los olores en Rhodnius prolixus . J. Insect Physiol. doi: 10.1016 / j.jinsphys.2008.07.004
21. Chapman, RF (1982). Quimiorrecepción: la importancia del número de receptores . Avances en fisiología de insectos, 16: 247-356
22. Lehane, M. (2005). La biología de los insectos chupadores de sangre . Segunda edicion. Prensa de la Universidad de Cambridge, Cambridge
23. Liang, D. y Schal, C. (1990). Ritmicidad circadiana y desarrollo de la respuesta conductual a la feromona sexual en la cucaracha macho de bandas marrones, Supella longipalpa. Entomología fisiológica, 15: 355-361
24. Linn, CE, Campbell, MG, Poole, KR, Wu, WQ y Roelofs, WL (1996). Efectos del fotoperiodo en el tiempo circadiano de respuesta a la feromona masculina en Trichoplusia ni: Relación con la acción moduladora de la octopamina . Revista de fisiología de insectos, 42: 881-891.